Bigger and Better Photons: The Road to Great FLIM?Results
原文鏈接 by Wolfgang Becker
翻譯 by 譚瓅
摘要:這篇文章試圖幫助bh FLIM技術(shù)的現(xiàn)有和未來用戶從FLIM實驗中獲得最佳結(jié)果。第一部分解釋了TCSPC FLIM的原理,并給出了記錄的光子分布的效果。它表明,測量壽命的信噪比在優(yōu)先取決于記錄的光子數(shù)量。第二部分重點介紹優(yōu)化光子數(shù),而不增加施加到樣品中的光應(yīng)力。我們討論了激發(fā)功率、采集時間、采集效率、數(shù)值孔徑、聚焦精度、對準(zhǔn)精度和探測器效率的影響。第三部分將重點介紹光子效率。它考慮了TCSPC計時參數(shù)、計數(shù)背景、像素數(shù)、儀器響應(yīng)函數(shù)的影響,以及多指數(shù)衰減函數(shù)的挑戰(zhàn)。最后一部分專門介紹數(shù)據(jù)分析。本文中的所有結(jié)論均通過在實際條件下記錄的真實測量數(shù)據(jù)進行演示。
第四部分:數(shù)據(jù)分析
數(shù)據(jù)分析無法彌補低質(zhì)量的FLIM數(shù)據(jù),但可以從樣本和實驗優(yōu)化設(shè)計后采集的數(shù)據(jù)里提取大量信息,詳情參考文獻[3]。以下部分僅介紹幾個要點,并在典型的 FLIM 數(shù)據(jù)上進行了演示。
選擇什么模型擬合?
關(guān)于FLIM數(shù)據(jù)分析的第一個問題通常是:我應(yīng)該使用哪種模型?需要多少個衰減分量才能擬合結(jié)果?
答案并不取決于樣品實際具有的衰減分量的數(shù)量,而是取決于你希望從樣品中找出什么信息。因此,除了你自己,沒有人能回答這個問題。你對特定生物系統(tǒng)中正在發(fā)生的事情有一個假設(shè),你設(shè)計了一個實驗和一個樣本來確認(rèn)或排除假設(shè)。只有你才能知道樣品中預(yù)期會發(fā)生什么,只有你才能知道衰減函數(shù)中預(yù)計會有多少分量。因此,你應(yīng)該選擇不同的,并具有相應(yīng)衰減分量數(shù)的模型(并且只有這個模型)來擬合數(shù)據(jù)。
比如,你正在做一個蛋白質(zhì)相互作用實驗,采用FRET作為蛋白質(zhì)相互作用的指示,用供體標(biāo)記一種蛋白質(zhì),用受體標(biāo)記另一種蛋白質(zhì)。在蛋白質(zhì)相互作用的地方應(yīng)該發(fā)生FRET,F(xiàn)RET縮短了供體的熒光壽命。因此,您可以在供體發(fā)射波長處獲取FLIM數(shù)據(jù)。在 SPCImage 中加載數(shù)據(jù)并使用單指數(shù)模型運行分析。細胞膜中的熒光壽命最短處 – 正是您預(yù)計的蛋白質(zhì)相互作用的地方(圖30,左)。
您可以檢查圖像的幾個特征點中的衰減函數(shù)。在壽命較短的地方,單指數(shù)模型不能正確擬合衰減函數(shù),但雙指數(shù)模型適合(圖 30,左二)。這是合理的:首先,并非所有供體分子都對受體具有正確的取向(FRET發(fā)生條件之一)。其次,蛋白質(zhì)相互作用是一種化學(xué)平衡,應(yīng)該有相互作用和非相互作用的供體的混合。這些組分具有不同的壽命,因此衰減曲線應(yīng)該是雙指數(shù)的。
現(xiàn)在,您可以使用雙指數(shù)模型運行數(shù)據(jù)分析。對于顯示,請選擇振幅加權(quán)平均壽命 tm,這是經(jīng)典 FRET 效率的表示,如圖 30 右二所示。接下來,選擇快衰減分量和慢衰減分量的振幅之比,該比值表示相互作用和非相互作用的供體的相對數(shù)量,它在細胞膜中蛋白質(zhì)相互作用的地方最高,見圖30,右圖。結(jié)果表明,雙指數(shù)模型適合擬合數(shù)據(jù),并且表明初始假設(shè)可能是正確的。

圖 30:FLIM-FRET 測量結(jié)果。從左到右:單指數(shù)壽命圖像,光標(biāo)位置衰減曲線,雙指數(shù)模型的振幅加權(quán)壽命圖像(顯示經(jīng)典FRET強度),振幅比圖像,顯示相互作用蛋白質(zhì)的相對比值)。
選擇要顯示的參數(shù)
SPCImage提供了幾個選項來顯示衰減函數(shù)的參數(shù):經(jīng)典的單指數(shù)壽命,衰減分量的壽命,振幅加權(quán)平均值和強度加權(quán)平均的分量壽命值,以及衰減分量中包含的相對強度,參考文獻[3],SPCImage 還顯示這些參數(shù)的比值。如果可能,應(yīng)選擇最清楚地顯示感興趣效果的參數(shù)組合。例如,在 FRET測量中,雙指數(shù)擬合的振幅加權(quán)壽命表示經(jīng)典的 FRET效率,以及振幅之比 a1/a2(相互作用供體的相對比值)。示例如上圖 30 所示。
代謝成像的示例如圖31所示。左圖顯示了自由和束縛NADH的衰減分量的振幅比,該參數(shù)表征細胞的代謝狀態(tài)。分量壽命(t1 和 t2)的圖像顯示在中間和右側(cè),壽命的不均勻性表明NADH處在單個線粒體中的不同的分子環(huán)境。

圖31:從左到右:活細胞的NADH圖像。振幅比,a1/a2(未束縛/束縛比)以及快衰減分量(t1,未束縛的NADH)和慢衰減分量(t2,束縛的NADH)的圖像。FLIM數(shù)據(jù)格式 512×512像素。底部:選定點的衰減曲線,1024個時間通道,時間通道寬度 10ps。
Binning——“像素合并”
FLIM用戶通常不贊成將壽命數(shù)據(jù)合并,認(rèn)為這是一種不科學(xué)地調(diào)整測量結(jié)果的方式。然而,正確的合并是任何準(zhǔn)確可靠的FLIM數(shù)據(jù)分析的關(guān)鍵。光學(xué)系統(tǒng)成像時,空間分辨率受到衍射極限的限制,單點光的衍射圖稱為Airy圓盤或(在顯微鏡下)點擴散函數(shù)。為了達到衍射極限分辨率,數(shù)據(jù)不得通過像素化來模糊。根據(jù)經(jīng)驗,點擴散函數(shù)的中心圓盤應(yīng)約按 5 x 5像素采樣,當(dāng)然,此區(qū)域內(nèi)像素中的壽命信息非常相似。因此,將這些像素的時間數(shù)據(jù)組合用于FLIM分析是合適的,請參見圖32左。結(jié)果是光子數(shù)大幅增加,壽命精度相應(yīng)提高。請注意,合并5 x 5像素區(qū)域會使凈光子數(shù)增加25倍!
在 SPCImage 軟件中,通過組合定義合并區(qū)域的數(shù)據(jù)并將凈衰減曲線分配給中心像素來執(zhí)行合并。因此,圖像中的有效像素數(shù)不會改變,該程序還符合優(yōu)質(zhì)圖像的美學(xué)角度。從視覺上看,圖像在開始看起來很丑陋之前,包含大量的強度噪聲。然而,在FLIM應(yīng)用中,壽命數(shù)據(jù)中相同數(shù)量的噪聲將使數(shù)據(jù)無用。因此,在具有一定強度噪聲的大量像素下顯示圖像是有意義的,但壽命平均在更大的區(qū)域內(nèi),并且相應(yīng)地增加了信噪比。
SPCImage 中的像素合并原理如圖 32 右所示。

圖 32:左:對強度圖像中的 Airy 圓盤進行過采樣,以及合并像素用于壽命計算。右:用于壽命計算的像素重疊合并。
SPCImage 軟件中合并參數(shù)(binning parameter) n 的含義如圖 33 所示。請注意,合并系數(shù)2對應(yīng) 5 x 5 像素區(qū)域,即大致對應(yīng)于正確采樣圖像中點擴散函數(shù)的面積。無意中,圖像通常使用較高的過采樣率拍攝,尤其是在使用掃描儀的高變焦系數(shù)時。因此,SPCImage提供合并系數(shù)最多為10像素合并,對應(yīng) 20 x 20 的像素區(qū)域。

圖 33:合并系數(shù)n的功能,‘Square’(左)和‘Circular’ (右)合并。
圖 34 給出了像素合并(binning)效果的演示,用512 x 512像素掃描BPEA樣品,將衰減曲線記錄到1024個時間通道中。未做像素合并的數(shù)據(jù)如圖 34 的頂行所示。左側(cè)顯示了(單指數(shù))壽命圖像。在不進行像素合并的情況下,每個像素的光子數(shù)量極低,請參閱中圖。因此,壽命圖像看起來很嘈雜,衰減時間散布在各處,請參閱右側(cè)的壽命直方圖。圖 34 的底行顯示了使用像素合并的數(shù)據(jù)。采用圓形合并,合并系數(shù)為 2,對應(yīng)21 個像素區(qū)域的合并。壽命圖像質(zhì)量優(yōu)異,凈衰減函數(shù)具有足夠的光子以進行合理擬合,并且壽命直方圖具有合理的寬度。從圖像中可以看出,顏色不會模糊,即像素合并不會對整個壽命的空間分辨率造成明顯的損失。

圖 34:像素合并(binning)在壽命分析中的影響。512 x 512 像素,1024 個時間通道。頂部:無合并。底部:合并系數(shù) 2,圓形合并,21個像素的衰減曲線的總和用于中心像素的分析。
合并系數(shù)為2(將21個像素的衰減曲線合并到中心像素中,見圖33),合并后的數(shù)據(jù)甚至足以進行雙指數(shù)衰減分析。結(jié)果如圖 35 所示,頂行從左到右顯示了快衰減分量和慢衰減分量的壽命圖像,以及兩個分量振幅之比的圖像。這三幅圖像在空間分辨率和壽命分辨率方面都具有良好的質(zhì)量。底行顯示參數(shù)直方圖,它們表明,分量壽命和振幅比是在良好的信噪比下獲得的(請注意不同的參數(shù)范圍)。

圖 35:與圖 34 中底行數(shù)據(jù)相同,雙指數(shù)衰減分析。從左到右:快分量的壽命圖像t1,慢分量的壽命圖像t2,振幅比圖像a1/a2。請注意不同的參數(shù)范圍。
圖36顯示了合并對壽命信息的空間分辨率的影響。該圖顯示了圖34和圖35中大細胞中心70 x 70像素區(qū)域的數(shù)據(jù)。正如預(yù)期的那樣,在合并系數(shù)≤2時,壽命對比度基本保持不變,請參考中心的花狀結(jié)構(gòu)。對于 4 和 6(右2和右1)的合并系數(shù),壽命對比度開始降低。來自相鄰像素的太多衰減數(shù)據(jù)被混合到凈衰減函數(shù)中,因此,中間的結(jié)構(gòu)越來越多地采用其更周圍緊鄰環(huán)境的壽命值。

圖36:放大圖34數(shù)據(jù)的70 x 70像素區(qū)域,顯示大細胞的中心。不同的合并系數(shù),從左到右的n= 0、1、2、4 和 6。在 bin ≤2(中心圖像),使用壽命對比度保持不變。它在 bin = 4 和bin = 6 時壽命對比度會降低,這可以從中心結(jié)構(gòu)顏色的褪色中看出。
圖像分割
與合并空間相關(guān)像素合并(binning)相比,圖像分割是組合了具有類似衰減特征的像素。
該過程如圖37左上所示,圖37顯示了SPCImage面板,其中包含低光子數(shù)的FLIM數(shù)據(jù),數(shù)據(jù)與圖 34 上行中的數(shù)據(jù)相同,所選像素中的衰減數(shù)據(jù)顯示在面板的右下角。根據(jù)這些數(shù)據(jù)計算出的壽命圖像是嘈雜的,并且壽命的直方圖(右上)非常寬。下一步如圖 37(右上方)所示。相量圖(phasor plot)是根據(jù)數(shù)據(jù)計算得出的,不出所料,相量分散在各處。
然而,壽命明顯不同的像素的相量(由顏色表示)出現(xiàn)在不同的相位/振幅位置。
在第三步中,選種一系列相量值,并在壽命圖像中突出顯示相應(yīng)的像素,請參見圖 37 左下角。可以移動選擇區(qū)域,更改其大小和形狀以突出顯示圖像中的所需結(jié)構(gòu)。在所示的示例中,已選擇細胞的線粒體。即使選擇可能不完整,所選像素也都在圖像的所需結(jié)構(gòu)內(nèi)。
在最后一步,圖37,右下角,所選像素的衰減數(shù)據(jù)被組合成一條衰減曲線,這條曲線包含超過300萬個光子。相比之下,圖34中單個像素中只有幾百個光子,在n=2的合并區(qū)域中大約有3000個光子。具有300萬光子的衰減曲線可以進行高精度分析,三指數(shù)分析很輕松,如圖 37 右下角所示,三指數(shù)衰減參數(shù)顯示在面板的右上方。

圖37:通過相量圖進行圖像分割,并將所選像素組合成高光子數(shù)的單衰減曲線。
固定分量的壽命進行分析
如果減少衰減參數(shù)的數(shù)量,多指數(shù)衰減分析將變得更加容易。因此,在數(shù)據(jù)分析中包括先驗知識可以減少結(jié)果中的噪聲。圖38顯示了小鼠開放性腫瘤的NADH圖像,用bh DCS-120 MACRO系統(tǒng)成像,有趣的參數(shù)是快速衰減分量的振幅a1。它代表游離NADH的比例,并指示組織相應(yīng)區(qū)域的新陳代謝類型。因此,使用雙指數(shù)模型對數(shù)據(jù)進行分析,并創(chuàng)建了a1圖像。使用所有參數(shù)(t1,t2,a1,a2)自由浮動來分析左側(cè)的圖像,固定t2分析右側(cè)的圖像。不出所料,右側(cè)的圖像噪點較小,腫瘤在圖像和a1直方圖中都更清晰地突出。右側(cè)的直方圖甚至顯示兩個不同的像素群,一個為 a1 = 0.65,另一個為 a1 = 0.83,這些正是通常在健康組織和腫瘤組織中發(fā)現(xiàn)的振幅。

圖38:小鼠腫瘤的NADH圖像顯示快速NADH成分的振幅a1。左:T1、t2、a1、a2浮動。右:t2 固定為最常用值,2400 ps。下行:圖像像素上 a1 的直方圖。
在衰減分量的壽命預(yù)計恒定的情況下,使用固定參數(shù)進行分析可以大大降低噪聲。但是,必須謹(jǐn)慎使用該技術(shù),熒光壽命從來都不是絕對恒定的,分子環(huán)境總是有影響的。如果分量壽命是固定的,但不是絕對恒定的,則擬合過程會以其他參數(shù)的較大變化來響應(yīng)。因此,在固定分量壽命條件下,獲得的擬合結(jié)果可能具有較大的系統(tǒng)誤差。
最后一步:圖像強度和參數(shù)范圍
FLIM圖像應(yīng)清晰明了地展示相關(guān)論文中聲稱的科學(xué)事實,圖像不僅應(yīng)顯示正確的衰減參數(shù),還應(yīng)將其顯示在適當(dāng)?shù)膹姸群退p參數(shù)范圍內(nèi)。默認(rèn)情況下,SPCImage 使用強度自動縮放,在正常情況下,自動縮放會產(chǎn)生合理的圖像。但是,自動縮放功能無法知道圖像的哪個部分是包含感興趣信息的部分。如果信息位于圖像的暗淡區(qū)域,則自動縮放不一定能提供最佳圖像。此外,其他完美的圖像也可能包含一些過于明亮的點。在這些情況下,無論它們來自何處,自動縮放都不會生成合理縮放的圖像,因此,應(yīng)關(guān)閉自動縮放,并手動調(diào)整強度刻度。圖39 顯示了一個示例,自動縮放(左)會導(dǎo)致不良的縮放強度范圍,手動調(diào)整強度范圍可生成正確平衡的圖像(右圖)。
具有不同參數(shù)比例的圖像的顯示如圖40和圖41所示,這些圖像顯示了分別以藍-綠-紅和紅-綠-藍兩色方向顯示的壽命圖像。參數(shù)范圍為 2000 到 3000 ps(左)和 2300 到 2700 ps(右)。哪種風(fēng)格最能體現(xiàn)感興趣的效果,必須根據(jù)具體情況來決定。

圖39:包含一些非常亮點的圖像。左:強度范圍的自動縮放,自動縮放功能可將強度縮放到最亮的特征,獲得的強度范圍不適合圖像的其余部分。右:手動縮放可在正確的強度范圍內(nèi)生成圖像,單指數(shù)擬合的壽命,顏色范圍從2000 ps(藍色)到 3000 ps(紅色)。

圖40:圖39所示數(shù)據(jù)的不同表示形式,單指數(shù)壽命,手動強度縮放。左:顏色方向 b-g-r,顏色范圍為 2000 至 3000 ps。右:顏色方向 b-g-r,顏色范圍為 2300 至 2700 ps。

圖 41:圖 39 中所示數(shù)據(jù)的不同表示形式,單指數(shù)壽命,手動強度縮放。左:顏色方向 r-g-b,顏色范圍為 2000 至 3000 ps。右:顏色方向 r-g-b,顏色范圍為 2300 至 2700 ps。
總結(jié)
熒光壽命可以從TCSPC FLIM數(shù)據(jù)中得出,信噪比接近每像素光子數(shù)的平方根。因此,表征FLIM數(shù)據(jù)質(zhì)量的最重要參數(shù)是光子數(shù)。通過使用實際示例,我們已經(jīng)證明,通過簡單地優(yōu)化探測效率和采集時間,可以獲得光子數(shù)為10倍。通過使用高效率的探測器,可以增加4倍,優(yōu)化的像素合并策略可以增加25倍。總而言之,這是光子數(shù)為1000倍、信噪比為32倍的提升。我們并不是說在所有情況下都可以達到如此大的改進,但幾乎在任何時候都可以實現(xiàn)相當(dāng)大的改進。
FLIM系統(tǒng)的第二個重要參數(shù)是光子效率,光子效率描述了系統(tǒng)探測到的單個光子對結(jié)果的貢獻程度。換句話說,它描述了系統(tǒng)與理想信噪比SQRT(N)的接近程度。雖然TCSPC系統(tǒng)接近理想,但光子效率通常可以通過使用正確的TCSPC定時參數(shù),避免記錄背景信號以及使用足夠快IRF的探測器來優(yōu)化。通常,光子效率提高兩到四倍是可能的,只需遵守一些簡單的信號記錄規(guī)則即可。
當(dāng)記錄和分析多指數(shù)衰減函數(shù)時,數(shù)據(jù)質(zhì)量變得尤為重要。在最常見的FLIM應(yīng)用中,多指數(shù)衰減是必須的。然后,信息主要在于衰減分量的振幅和壽命,而不是凈衰減函數(shù)的表觀壽命。這意味著不僅探測效率和光子效率很重要,儀器響應(yīng)函數(shù)IRF的寬度也很重要。此外,解析多指數(shù)衰減函數(shù)的選項在很大程度上取決于衰減函數(shù)的形狀,它們偏離單指數(shù)曲線的距離越大,就越能很好地分辨它們。因此,考慮好FLIM選項的實驗規(guī)劃和樣品優(yōu)化設(shè)計可以對研究的結(jié)果產(chǎn)生巨大影響。
最后,數(shù)據(jù)分析在任何FLIM實驗中都起著重要作用,正確應(yīng)用的數(shù)據(jù)分析可以從記錄的數(shù)據(jù)中提取最大數(shù)量的信息。此外,它能夠以出版就緒的風(fēng)格呈現(xiàn)數(shù)據(jù),令人信服地支持相關(guān)出版物中提出的科學(xué)主張。
References
1. W. Becker, Advanced time-correlated single-photon counting techniques. Springer, Berlin, Heidelberg, New York,2005
2. W. Becker, The bh TCSPC handbook, 8th edition. Becker & Hickl GmbH (2019), available online on www.becker-hickl.com. Please contact bh for printed copies.
3. SPCImage NG data analysis software. In: W. Becker, The bh TCSPC handbook, 8th edition. Becker & Hickl GmbH(2019)
4. W. Becker (ed.), Advanced time-correlated single photon counting applications. Springer, Berlin, Heidelberg, New York (2015)
5. Becker & Hickl GmbH, DCS-120 Confocal and Multiphoton Scanning FLIM Systems, user handbook 87th ed. (2019).?Available on www.becker-hickl.com
6. Becker & Hickl GmbH, Modular FLIM systems for Zeiss LSM 510 and LSM 710 family laser scanning microscopes.?User handbook. Available on www.becker-hickl.com
7. Becker & Hickl GmbH, FLIM systems from Zeiss LSM 980 Laser scanning microscopes, addendum to modular FLIM?systems for Zeiss LSM 510 and LSM 710 family laser scanning microscopes. Available on www.becker-hickl.com
8. Fast-Acquisition TCSPC FLIM: What are the Options? Application note, available from www.becker-hickl.com
9. W. Becker, V. Shcheslavkiy, S. Frere, I. Slutsky, Spatially Resolved Recording of Transient Fluorescence-Lifetime?Effects by Line-Scanning TCSPC. Microsc. Res. Techn. 77, 216-224 (2014)
10. R.M. Ballew, J.N. Demas, An error analysis of the rapid lifetime determination method for the evaluation of single?exponential decays, Anal. Chem. 61, 30 (1989)
11. W. Becker, B. Su, K. Weisshart, O. Holub, FLIM and FCS Detection in Laser-Scanning Microscopes: Increased?Efficiency by GaAsP Hybrid Detectors. Micr. Res. Tech. 74, 804-811 (2011)
12. Wolfgang Becker, Cornelia Junghans, Axel Bergmann, Two-photon FLIM of mushroom spores reveals ultra-fast decay component. Application note, available on www.becker-hickl.com.
13. Becker & Hickl GmbH, Ultra-fast HPM detectors improve NADH FLIM. Application note, www.becker-hickl.com
14. Becker & Hickl GmbH, Two-Photon FLIM with a Femtosecond Fibre Laser. Application note, www.becker-hickl.com
15. Becker Wolfgang, Suarez-Ibarrola Rodrigo, Miernik Arkadiusz, Braun Lukas, Metabolic Imaging by Simultaneous?FLIM of NAD(P)H and FAD. Current Directions in Biomedical Engineering 5(1), 1-3 (2019)
16. H.C. Gerritsen, M.A.H. Asselbergs, A.V. Agronskaia, W.G.J.H.M. van Sark, Fluorescence lifetime imaging in?scanning microscopes: acquisition speed, photon economy and lifetime resolution, J. Microsc. 206, 218-224 (2002)
17. M. K?llner, J. Wolfrum, How many photons are necessary for fluorescence-lifetime measurements?, Phys. Chem. Lett.?200, 199-204 (1992)
18. I. Isenberg, R.D. Dyson, The analysis of fluorescence decay by a method of moments. Biophys. J. 9, 1337-1350 (1969)
